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Marc-Alexandre Lafrance

Étudiant - Doctorat en médecine | 3e année

Passionné
Travaillant
Autonome
Rigoureux
Résilient
Marc-Alexandre Lafrance
Canada (Québec)
Situation professionnelle
Etudiant
CV réalisé sur DoYouBuzz

Doctorat de médecine (M.D.)

Université Laval

Depuis septembre 2020
Formation doctorale de premier cycle pour l'obtention du grade M.D.

Maîtrise en microbiologie-immunologie (M.Sc.)

Université Laval

Depuis 2019
Projet de recherche sur la détermination des paramètres immunologiques induits par un vaccin contre le VIH dans un modèle de primates non-humains.

Baccalauréat en microbiologie (B.Sc.)

Université Laval

Janvier 2016 à juillet 2019
Formation dans le but d'acquérir les compétences techniques et les notions fondamentales de la microbiologie et de la virologie.
En savoir +
Bourse de formation à la maîtrise du Fond de Recherche du Québec en Santé
Bourse pour l'excellence académique
Bourse de soutien pour les étudiants gradués oeuvrant au sein du Centre de recherche du CHU de Québec - Axe des maladies infectieuses et immunitaire

Boursier - Bourse de recrutement à la maîtrise Joseph-Demers

Bourse de recrutement à la maîtrise attribuée par la Faculté de Médecine de l'Université Laval

2019 à 2020
Bourse offerte aux étudiants démontrant un dossier académique exemplaire lors des études de premier cycle.

Boursier - Bourse d'excellence de 1er cycle - CRSNG

- Bourse d'excellence permettant d'effectuer un stage estival en sciences fondamentales

Mai 2018 à août 2018
Bourse offerte aux étudiants démontrant des aptitudes exceptionnelles en recherche et au niveau académique.
Distinction de l'étudiant méritant du département de biochimie, de microbiologie et de bio-informatique. L'étudiant est sélectionné par la direction du département. Le prix a été remis lors du gala des étudiants de la Faculté des Sciences et de Génie

Diplôme d'études collégiales en sciences de la nature

Cégep de Sainte-Foy

Août 2013 à décembre 2015
Ensemble du cursus obligatoire complété.
  • Mise au point d'un vaccin contre le VIH
  • Utilisation d'un plateforme vaccinale (VSV) - Pseudotypage de virus
  • Utilisation de modèles animaux (souris, cochons d'inde, moutons et macaques rhésus)
  • Virologie
  • Cytométrie en flux, ELISA, et autres techniques d'immunologie
  • PCR et RT-qPCR
  • Mise au point d'une technique de mesure de la physiologie respiratoire d'un modèle murin en absence de surfactant (Flexivent)
  • Étude de l'impact de la cigarette de tabac sur le stress du réticulum endoplasmique
  • Étude portant sur la physiologie respiratoire d'une diète déficiente dans un modèle murin
  • Protocole portant sur l'effet de la protéine transmembranaire LRP1 et son rôle dans la réponse inflammatoire pulmonaire en contexte tabagique
  • Plusieurs techniques maîtrisées:
    • Utilisation de l'appareil Flexivent (étude des paramètres respiratoires de modèles murins paralysés)
    • Mise au point d'une technique de lavage bronchoalvéolaire sur Flexivent (permettant d'isoler l'effet d'un surfactant dysfonctionnel)
    • ELISA (sérum et lavage bronchoalvéolaire)
    • Efflux de cholestérol radioactif chez les macrophages (manipulation de 3H-cholestérol, culture cellulaire, lecture de la radioactivité)
    • Cytométrie en flux (échantillonnage sanguin, extraction de cellules de la moelle osseuse, marquage avec anticorps couplés, détermination de la viabilité cellulaire)
    • Dosages colorimétriques
    • Modèles murins
    • Extractions d'ARN
    • PCR et RT-qPCR
    • Cytologie, histologie, immunohistochimie
    • Culture cellulaire en BSL-2
En savoir +
  • Premiers soins généraux
  • Discussion avec les donneurs sur le sujet de l'importance des dons de produits sanguins tant pour les urgences médicales que pour la recherche biomédicale.
  • Explication des raisons d'exclusion quant aux dons sanguins (risques infectieux)
En savoir +
  • Protocole portant sur l'effet pulmonaire d'une diète déficiente en contexte tabagique
  • Protocole d'injection IV de tumeurs pulmonaires murines en contexte de vapotage (cigarette électronique)
  • Plusieurs techniques maîtrisées:
    • Modèles murins (IP, IV, IN, anesthésie à l'isoflurane et la kétamine/xylazine, chirurgies, prise de sang, prise de poids, vérification de l'état de santé, exposition "whole-body" à la fumée de cigarette, manipulations connexes)
    • Extraction d'ARN (récupération des organes, Trizol/Quiagen, électrophorèse d'ARN, dosage UV, rétrotranscription en ADNc)
    • PCR et RT-qPCR (CFX384 et RotorGene)
    • Cytologie sanguine et des lavages bronchoalvéolaires (cytospin, "blood smear", colorations, identification des leucocytes humains)
    • Histologie hépatique et pulmonaire (fixation dans la formaline ou dans l'OCT, coupe au micro-tome, colorations H&E, etc.)
    • Culture cellulaire (manipulations aseptiques en BSL-2 pour lignées oncologiques et primaires, hématimètre, dédifférenciation)
    • Dosage colorimétrique du cholestérol
    • Connaissances en HLPC, micro-CT scan, Western Blot.
En savoir +
  • Responsable des formations pour les nouveaux employés sur les notions liées aux activités de plein-air
  • Conseils concernant les activités de plein-air, les sports et les séjours en forêt (survie, purification de l'eau, abris).
  • Service à la clientèle
  • Manipulation d'animaux d'expérience (souris, hamster, lapin, furet, cobaye, mouton, primates non-humains)
    • Connaissance de la théorie derrière le travail avec les souris, les rats, les primates, les lapins, etc.
    • Durant mes stages en milieu académique, j'ai manipulé à répétitions des souris dans divers contextes: injections (IV, IM, IP et intratrachéal), anesthésie, contention, chirurgie, nécropsie, etc.)
  • Maîtrise de la culture cellulaire
    • Maîtrise des méthodes aseptiques pour culture en niveau II (Enceinte de biosécurité II)
    • Capacité de mises en culture de cellules prélevées in vivo
    • Culture de cellules cancéreuses, de macrophages pulmonaires et de fibroblastes
  • Connaissances théoriques et maîtrise des techniques de culture microbiologique
    • Maîtrise des techniques de culture anaérobies et aérobies
    • Capacité de mise au point de milieux de culture complexes
    • Isolement de microorganismes à partir d'échantillons complexes
    • Échantillonnage de différents milieux
  • Maîtrise du PCR et RT-qPCR
    • Extraction d'ARN
    • Rétrotranscription des ARNm en ADNc
    • Mise au point des amorces
    • PCR quantitatif
    • Analyse des données émises
  • Maîtrise des techniques d'ELISA
  • Capacité d'effectuer de la cytométrie en flux sur cellules vivantes
    • Sélection des anticorps adéquats
    • Marquage intra- et extracellulaires
    • Connaissances du passage des cellules en cytométrie de flux
    • Capacité d'analyser les données émises
  • Connaissances des bioaérosols et des modes de transmission des agents pathogènes humains
    • Le cours universitaire sur les bioaérosols a permis la maîtrise de notions relatives à cette science ainsi que les risques sur la santé humaine causés par les bioaérosols et les aérosols.
  • Notions importantes sur la santé et sécurité
    • Avec le cours universitaire "Santé et sécurité au travail", j'ai pu me familiariser avec la médecine du travail et la santé au travail dans l'objectif d'avoir une méthode de travail sécuritaire pour moi-même et mes collègues.
  • Maîtrise de la langue française orale et écrite
  • Niveau d'anglais avancé oral et écrit
  • Aisance rédactionnelle (articles scientifiques et rapports de recherche)
  • Aisance pour les présentations orales et par affiches
  • Connaissances des logiciels Prism, Rotorgene, ImageJ, ToxyScan, CFX
  • Connaissances avancées sur l'utilisation de MacOS et de Windows
  • Connaissances sur Microsoft Word, PowerPoint, Excel, Outlook.
  • Course à pied
  • Plein-air (escalade, randonnée, kayak, etc.)
  • Intérêt pour les pays en développement (voyage humanitaire)
  • Intérêt pour les pays scandinaves
  • Art inuit
  • Musique classique
  • Lecture